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重庆一猪瘟与巴氏杆菌混合感染诊断与治疗

     多杀性巴氏杆菌(Pasteurellamultocida,PM)对鸡、鸭、鹅、野禽、猪、牛、羊、马、兔等均可致病。急性型呈出血性败血症,迅速死亡;亚急性型于黏膜关节等部位发生出血性炎症等;慢性型则表现为皮下组织、关节、各器官的局灶性、坏死性炎症等。猪瘟为一种急性或慢性、热性和高度接触性传染病,以高热稽留和小血管变性引起的广泛出血、梗塞和坏死为主要特征,不分年龄、性别、体重大小,也不分季节均可染病,患病猪只抗病力降低,极易引起继发感染。由猪瘟病毒感染引起巴氏杆菌的继发感染会对猪机体造成严重损伤。

1发病情况

     重庆市某猪场保育猪发生严重的呼吸系统疾病,以咳嗽、稽留热、食欲减退为主,逐渐消瘦、腹泻。经抗生素治疗后症状减轻,2~3d后又复发,严重病例4~6d死亡,发病率35%,死亡率30%,场主疑为病毒感染,遂于2013年9月就诊。通过对猪场实施隔离、消毒、严格控制人员出入、治疗、实验室诊断等措施,有效地控制住了疾病的蔓延。通过病理剖检、细菌分离检测、PCR检测,证实该病例为猪瘟病毒及多杀性巴氏杆菌混合感染引起。

2临床症状

     患猪呼吸困难,呈腹式呼吸,咳嗽,部分猪伴有腹泻。病猪食欲减少或废绝,体温高热(41~42℃),心跳加快,可视黏膜发绀,腹侧、耳根和四肢内侧皮肤出现紫斑,指压不褪色,眼睛出现分泌物。有的猪表现胸膜肺炎症状(干咳、呼吸困难),鼻孔流出浆性或脓性分泌物,初便秘,后腹泻,消瘦无力,卧地不起。

3实验室诊断

3.1病料处理

     无菌采取病猪肺脏与肺门淋巴结加入无菌PBS液(pH值7.2)和适量灭菌石英砂研磨制成1∶5悬液,反复冻融3次后12000r/min离心30min,取上清液。并将初步纯化的病毒经30%和60%两层蔗糖(wt/wt)不连续梯度离心,收集30%~60%蔗糖间的乳白色病毒带于PBS中透析过夜,然后用聚乙二醇PEG-6000浓缩100倍,制成病毒浓缩液10mL,-80℃保存。分别取0.5mL用于DNA、RNA提取。试剂盒分别用10μL20mg/mL的蛋白酶K58℃孵育20min、65℃消化50min。再用QIAGENDNA提取试剂盒、QIAGENRNA提取试剂盒进行基因组提取,提取的DNA、RNA基因组-20℃保存。对提取RNA用TaKaRacDNA反转录试剂盒进行cDNA反转录,反转录产物于4℃保存,后进行RT-PCR检测。

3.2病理剖解

     发生呼吸系统症状猪全身黏膜、浆膜和皮下组织大量出血点,咽喉部及其周围结缔组织的出血性浆液浸润。切开颈部皮肤时,可见大量胶冻样淡黄或灰青色纤维素性浆液。全身淋巴结出血,切面红色等全身出血性病变;支气管内部有少量泡沫,腹股沟淋巴结水肿、出血;有的保育猪具有纤维素性肺炎,肺脏有肝变区,周围伴有气肿;胸膜有纤维素性附着物。腹泻猪严重脱水,肠道内有多量黄色液体内容物和气体,肠黏膜充血、出血、肿胀,呈急性卡他性炎症,以十二指肠最为明显。其次为空肠和回肠,胃黏膜红肿,表面附有多量黏液,内有腥臭味和黄色凝乳块,肠系膜淋巴结呈现出弥漫性小出血点,肝脏、肾脏有小凝固性坏死灶或小出血点。

3.3病原菌分离

     无菌采取病猪的肺脏、肝脏组织进行触片,取病料划线接种于鲜血琼脂平板上,37℃培养24h,观察细菌的生长情况、菌落特征。挑取不同菌落形态细菌做革兰染色、镜检,挑取菌落大小均为1mm左右、表面光滑、湿润、呈露珠状菌落,划线分离培养,然后对分离培养的菌落进行瑞氏染色。纯化的细菌提取基因组,试剂盒选用QIAGENDNA提取试剂盒。

3.4PCR扩增

     根据临床症状分别进行伪狂犬病毒(PRV)、圆环病毒2型(PCV-2)、猪瘟病毒(CSFV)、猪乙型脑炎病毒(JEV)、猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、多杀性巴士杆菌(PM)的PCR检测。

     根据GenBank设计待测病原基因上下游引物,CSFV参考基因组NC_002657.1保守区、PRRSV参考基因组JX512910.1保守区、JEV参考保守序列IND-WB-JE5多聚蛋白基因KC879326.1、PRV参考gll基因M17321.1设计、PCV-2参考ORF2基因KC336417.1、巴氏杆菌(PM)通过保守序列KMT-1基因DQ871029.1设计引物,并通过Blast比对引物特异性。引物序列见表1。
  
     CSFV、PRRSV及JEV为RNA病毒,进行RT-PCR扩增,用TaKaRacDNA反转录试剂盒进行反转录的cDNA为模板。反应体系为25μL体系:2×TaqPCRMasterMix12.5μL,ddH2O8.5μL,上、下游引物各1μL,反转录的cDNA2μL。

     扩增条件:95℃预变性5min;94℃变性30s,62℃退火30s,72℃延伸30s,共35个循环;72℃延伸10min,4℃保存。

     对PRV、PCV-2、PM进行PCR扩增,扩增为25μL体系:2×TaqPCRMasterMix12.5μL,ddH2O9.5μL,上、下游引物各1μL,DNA模板1μL。

     扩增条件:95℃预变性5min;94℃变性30s,58℃退火30s,72℃延伸30s,共35个循环;72℃延伸10min,4℃保存。

     琼脂糖凝胶电泳及成像:取5μLPCR扩增产物与5μL的6×LoadingBuffer,DL2000DNAMarker经1.2%的琼脂糖凝胶电泳检测,用BIO-RAD成像系统拍照观察。

4结果

4.1细菌的分离及培养结果

     以病危猪肺脏做组织触片,进行革兰染色,阴性,单个存在,形态一致,菌体近圆形,两极着色不明显。后进行瑞氏染色,可见典型两极着色中间透明的短杆状菌。

4.2PCR检测结果

     提取组织中总RNA的PRRSV、JEV病原检测结果均为阴性;组织总DNA检测的PRV、PCV-2均为阴性;CSFV的PCR扩增阳性、多杀性巴氏杆菌KMT-1为阳性。
   
5治疗

5.1紧急隔离

     对体况健康受威胁猪紧急免疫接种猪瘟-蓝耳病二联弱毒疫苗。将病猪赶至同一圈舍,两圈舍相隔20m。严格限制人员进出,控制人员流动,封锁疫病猪舍通道,将猪场人员分为两部分,一部分服务于患病猪舍,另一部分服务于健康猪圈舍,并严格控制两部分人员交叉接触。饲料、器具严格分开使用,并严格限制放置地点。人员进入圈舍后严格更换衣服,灭菌消毒。对死亡猪进行深埋处理。

5.2消毒

     用1∶100菌毒杀消毒猪舍及周围环境、进出通道,每天2次。圈栏、器具每2d用神五消毒液500倍液与金碘消毒剂600倍液稀释交替消毒。人员进出更换衣服,并用1∶200菌毒杀喷洒衣物、鞋子。

5.3治疗

     病猪采用猪瘟-蓝耳二联高免血清按每千克体重0.05mL注射,每只每天2次,连用3d;地塞米松注射液1mL,每只每天1次,连用3d;抗生素用诺氟沙星与卡那霉素联合用药,肌肉注射,每千克体重诺氟沙星0.3mL、卡那霉素0.1mL,每天2次,连用10d;对血便、腹泻猪肌肉注射止血敏,每只每天注射1mL,连用2d,并对其进行口服灌液,液体参入氯化钾、维生素C、维生素B1、维生素B2;对食欲较差或拒食病猪,灌液中加入葡萄糖。

6小结

     目前,猪瘟的很多临床症状表现为非典型,仅凭临床症状已无法确诊,并极易造成误诊,混合感染在猪病中所占比例越来越大,更给兽医临床诊断带来了很大的困难。所以必须经过实验室检验等综合性诊断才能确诊,面对混合感染愈加严重的情况一定要分清主次,以便采取综合性防治措施,才能迅速控制疫情。

     对于猪病的防治,一定要以预防为主,定期免疫接种重大疫病疫苗。对继发性感染的病猪,一定要快速鉴别致病菌,并对其进行药敏试验,以便快速针对继发感染细菌选择敏感性抗生素,以防止滥用抗生素导致的抗生素失效。

     要保持饲养场与外界隔离,以防止外来病原对本场牲畜侵袭。严格控制人员、车辆进出,进出要有消毒措施。对购进牲畜要进行隔离,以防止潜在病原带入养殖场,影响本场健康牲畜。饲养用的器具、水要严格消毒。人员应在工作中多注意牲畜情况,以做到早发现、早隔离、早治疗。

(重庆市畜牧技术推广总站,朱燕;西南大学,胡艳;重庆市南岸区农林水利局,黄晓玲)

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